Введение
На сегодняшний день одним из актуальных и
перспективных направлений лесного хозяйства,
связанного с принципом многоцелевого, рациона-
льного, непрерывного и неистощительного
лесопользования, является заготовка недревесных
ресурсов леса для удовлетворения потребностей
общества в них. Однако вмешательство
антропогенных факторов в природные процессы
стремительно сокращает запасы ягод клюквы,
брусники, черники и др., а также снижает
качество грибных угодий. В связи с увеличением
площадей неиспользуемых лесных земель,
нарушенных промышленными разработками, в
том числе осушенных и выработанных торфяных
месторождений, остается актуальным вопрос их
рекультивации. Его можно разрешить с помощью
создания плантаций лесных ягодных растений,
произрастающих на болотных почвах. Также
создание плантаций лесных ягодных растений на
выработанных торфяниках позволит повысить
эффективность работы сельскохозяйственной
и лесной отрасли, обеспечивая рентабельность
использования побочной продукции леса [1].
За последнее десятилетие среди потребителей
и заготовителей недревесной продукции леса, в
частности лесных ягодных растений, сильно возрос
интерес и спрос на посадочный материал клюквы
болотной (Oxyccocus palustris Pers.), связанный с
высокой морозоустойчивостью, продуктивностью
и продолжительностью жизни данного вида. По
сравнению с клюквой крупноплодной (Oxyccocus
macrocarpus (Ait.) Pers.) клюква болотная менее
урожайна, сильнее угнетается сорными растениями и
сложнее поддается механизированной уборке урожая
ягод. Однако в таежной зоне европейской России
клюква болотная, в силу невысокой потребности в
тепле, более перспективна для культивирования, чем
клюква крупноплодная. Различными исследованиями
установлено, что при выращивании на плантациях
она показывает высокий процент урожая, чем в
естественных зарослях. Кроме того, выращивание
1 Central European Forest Experimental Station, Kostroma, Russia
2 Kostroma State Agricultural Academy , Karavaevo, Russia
3 Federal Horticultural Research Center for Breeding, Agrotechnology and Nursery , Moscow, Russia
4 All-Russian Scientific Research Institute of Silviculture and Mechanization of Forestry , Pushkino, Russia
Received: January 18, 2021 Accepted: X X, 2021
*е-mail: makarov_serg44@mail.ru
© S.S. Makarov, I.B. Kuznetsova, M.T. Upadyshev, S.A. Rodin, A.I. Chudetsky, 2021
Abstract.
Introduction. The last decade saw a considerable increase in the demand for European cranberry planting material (Oxyccocus
palustris Pers.) among consumers of non-timber forest products. Cranberry possesses high nutritional and medicinal value. Cultivars
and hybrids of European cranberry prove extremely productive for plantation growth using the method of clonal micropropagation
with revitalized planting material.
Study objects and methods. The research featured European cranberry plants of the Dar Kostromy cultivar and its hybrid form 1-15-635.
The study focused on the effect of various medications and growth regulators on the biometric profile of European cranberry and its
adaptation to non-sterile conditions at all stages of in vivo clonal micropropagation.
Results and discussion. During the introduction stage, the highest viability belonged to the explants treated with AgNO3 (95–96%)
and Lizoformin 3000 (5%) as the main sterilizing solutions at a 10-min exposure and a 5% solution of Ecosterilizer (1:1) at a
20-min exposure (90–95%). During the micropropagation proper, the number, average length, and total growth of shoots increased
as the concentration of cytokinin 2ip in the WPM 1/4 nutrient medium rose from 1.0 to 5.0 mg/L. At the stage of in vitro rooting, the
maximal number, average length, and total growth of roots in regenerated plants for both cultivars were observed when Kornerost
5.0 mg/L was added to the WPM 1/4 nutrient medium. At the stage of adaptation to in vivo conditions, Micogel 0.2 mg/L contributed
to the highest survival rate (94–100%).
Conclusion. During clonal micropropagation in vitro, the biometric profile of European cranberry (Oxyccocus palustris Pers.) and its
survival rate under non-sterile conditions in vivo proved to depend on various growth-regulating substances and their concentrations.
Keywords. European cranberry, clonal micropropagation, in vitro, in vivo, sterilizing solution, adaptation
Funding. The research was part of the State Task “Conducting Applied Scientific Research” of the Federal Forestry Agency of the
Russian (No. 1061).
For citation: Makarov SS, Kuznetsova IB, Upadyshev MT, Rodin SA, Chudetsky AI. Clonal Micropropagation of Cranberry
(Oxycoccus palustris Pers.). Food Processing: Techniques and Technology. 2021;51(1):67–76. (In Russ.). https://doi.
org/10.21603/2074-9414-2021-1-67-76.
69
Макаров С. С. [и др.] Техника и технология пищевых производств. 2021. Т. 51. № 1 С. 67–76
высокопродуктивных сортов и гибридов клюквы
болотной способствует повышению урожайности
плантаций данной ягодной культуры [2].
Благодаря уникальному химическому составу
клюква обладает высокой пищевой и лекарственной
ценностью. Плоды клюквы содержат сахара,
органические кислоты, бензойную и хлорогеновую
кислоты, пектиновые вещества, витамины (С, B1,
B2, B5, B6, PP, K1), макро- и микроэлементы
(калий, фосфор, кальций, железо, марганец, медь,
молибден, магний, йод, бор, барий, кобальт,
цинк, серебро, алюминий и др.), а также бетаин
и биофлавоноиды (антоцианы, лейкоантоцианы,
катехины, флавонолы, фенолокислоты) [3–5].
Плоды клюквы широко используются в пищевой
промышленности и народной домашней кулинарии
как в сыром, так и переработанном виде. Наиболее
популярны соки, морсы, кисели, настойки,
соусы, добавки в консервированные заготовки и
квашеные продукты, а также множество других
способов приготовления. Экстракт ягод обладает
разнообразными профилактическими и лечебными
свойствами. Он оказывает антисептическое,
гипотензивное, противовоспалительное, антисклеро-
тическое и противоцинготное действие.
Влияет на водно-солевой обмен, стимулирует
деятельность поджелудочной железы и проявление
гемостатического эффекта. Способствует повышению
уровня гемоглобина, поддержанию работы сердца,
повышению эластичности стенок сосудов. Экстракт
ягод клюквы может успешно применяться при
простудных заболеваниях, ангине, ревматизме,
цинге, малокровии, почечнокаменной болезни,
повышенном кровяном давлении, заболеваниях
мочевого пузыря и мочевыводящих путей,
заболеваниях желудка и печени, гипо- и авитаминозе
C, кожных заболеваниях и др., а также в качестве
антипаразитарного средства. Клюква тонизирует,
освежает, придает бодрость, повышает умственную
и физическую трудоспособность, а содержащиеся
в ягодах клюквы пектиновые вещества обладают
способностью связывать и обезвреживать соединения
свинца, кобальта, цезия, стронция и других тяжелых
металлов и их радиоактивных изотопов [6–10].
Плантационное выращивание лесных
ягодных растений на неиспользуемых лесных и
нелесных землях требует большого количества
высококачественного посадочного материала.
Удовлетворить данные потребности можно
путем разработки перспективных способов
получения посадочного материала, учитывающих
биологические особенности лесных ягодных
растений и обеспечивающих высокую эффективность
их размножения. Поскольку существующие
традиционные способы размножения не всегда
обеспечивают стабильность результатов, весьма
трудозатратны и не находят широкого применения,
то необходимо использовать экономически
успешный способ размножения растений: клональное
микроразмножение. Этот способ размножения
осуществляют на искусственных питательных средах
в культуре in vitro. Основными достоинствами
данного метода являются высокий коэффициент
размножения и возможность получения заданного
количества высококачественного и здорового
посадочного материала вне сезонности в условиях
небольшой по площади лаборатории [11].
Отечественными и зарубежными авторами
исследовались особенности клонального микро-
размножения клюквы крупноплодной, в частности
методами активации пазушных меристем и
индукции адвентивных почек тканями экспланта, с
использованием регуляторов роста цитокининовой
(2ip, кинетин, зеатин) и ауксиновой (ИУК, ИМК)
групп [12–14]. Однако в России до сих пор мало
уделяется должного внимания культуре in vitro
высших растений [15].
Цель исследования – изучение влияния различных
росторегулирующих веществ и их концентраций на
всех этапах клонального микроразмножения клюквы
болотной in vitro на биометрические показатели
растений и приживаемость в нестерильных условиях
in vivo.
Объекты и методы исследования
Исследование проводилось в лаборатории
клонального микроразмножения растений на базе
филиала ФБУ ВНИИЛМ «Центрально-европейская
лесная опытная станция» в 2019–2020 гг.
по общепринятым методикам, адаптированным к
местным условиям произрастания [11]. Объектами
исследований служили растения клюквы болотной
сорта «Дар Костромы» и гибридной формы 1-15-
635, отобранные на опытных участках на месте
выработанных месторождений торфа переходного
типа в Костромском районе Костромской области.
Сорт «Дар Костромы» получен на Костромской
лесной опытной станции ВНИИЛМ в результате
селекционной работы, направленной на создание
сверхранних и хорошо адаптированных к
климатическим условиям российского Нечерно-
земья сортов, путем отбора из массового
посева семян клюквы болотной из природных
популяций данного вида в Рязанской области.
Сорт среднего срока созревания. Представляет
собой вегетативно-подвижный кустарничек
шпалерного типа. Стелющийся побег имеет бурую
окраску, среднюю облиственность, волосистое
опушение; приподнимающийся побег средней
длины характеризуется промежуточным типом
роста, красно-коричневой окраской, средней
облиственностью, волосистым опушением. Лист
70
Makarov S.S. et al. Food Processing: Techniques and Technology, 2021, vol. 51, no. 1, pp. 67–76
стелющегося и приподнимающегося побега длинный,
средней ширины, широко-ланцетной формы зеленой
окраски. Цветковая почка крупная, на побеге – одна
(верхушечная). Плод (ягода) крупного размера
(12,5×16,5 мм) плоскоокруглой формы с ребристой
поверхностью. Средняя масса ягоды 1,5–1,6 г. Сорт
средне самоплодный. Плодоношение начинается на
3 год после посадки черенков. На 4 год отмечается
возрастание урожая ягод. С 5 года после посадки
черенков ежегодно отмечается присущий сорту
урожай с небольшими колебаниями по годам. В пору
плодоношения урожайность высокая (1,6–1,9 кг/м2).
Период товарного плодоношения продолжительный.
Сорт среднего срока цветения и созревания ягод. В
условиях Центрально-европейской части России,
в частности в южно-таежном лесной районе
Европейской части России (Костромская область),
начало цветения отмечено в начале первой декады
июня, а ягоды полностью созревают в первой декаде
сентября. Сорт малозимостойкий в бесснежный
период, высокозимостойкий под снегом или при
вмораживании заросли в лед; слабо устойчив к
снежной плесени без вмораживания. Устойчив
к вредителям (вересковый листоед, античная
волнянка, пятнистая волнянка). К достоинствам
сорта относятся крупноплодность и высокий уровень
урожайности. Недостатками данного сорта являются
формирование большей части урожая внутри заросли
и неодномерность ягод.
Крупноплодная и высокоурожайная гибридная
форма 1-15-635 отобрана из гибридной семьи
♀15V×♂Virussaare на Центрально-европейской
лесной опытной станции ВНИИЛМ. Материнская
форма 15V отобрана из естественной популяции
(клюквенное болото Южной Карелии) сотрудниками
Института биологии Карельского научного центра
по принципу исключительной крупноплодности.
Отцовский высокоурожайный сорт Virussaare
создан в Эстонии. Форма среднеспелая, очень
быстро начинает плодоносить. Средняя масса одной
ягоды 1,36–1,89 г. Ягоды крупные (до 3,09–3,26 г),
округлые, темно-красные. Средняя урожайность
1,5–2,0 кг/м2.
Процесс клонального микроразмножения состоит
из 4 этапов:
– введение в культуру in vitro включает в себя
выбор растения-донора, изолирование эксплантов и
получение стерильной культуры;
– «собственно микроразмножение» включает обычно
3–4 пассажа на питательную среду с добавлением
регуляторов роста цитокининовой группы с
целью получения нужного количества растений-
регенерантов;
– укоренение in vitro подразумевает укоренение
размноженных побегов на питательной среде с
добавлением регуляторов роста ауксиновой группы;
– адаптация к условиям in vivo, а затем к почвенным
условиям: выращивание растений в условиях
теплицы и подготовка их к высадке в открытый
грунт [11].
На этапе введения в культуру in vitro изучали
влияние различных стерилизующих растворов
и экспозиции обработки на жизнеспособность
эксплантов клюквы болотной. В качестве эксплантов
использовали одревесневшие черенки с двумя
почками. Очищенные и промытые черенки клюквы
болотной на 0,5 мин помещали в стакан с 70 %
спиртом, после этого промывали в 5 порциях
стерильной дистиллированной воды. В качестве
основных стерилизаторов использовали растворы
сулемы (0,2 %), азотнокислого серебра AgNO3 (0,2 %),
экостерилизатора бесхлорного 5 % (в соотношении
1:1), хлорной извести (в соотношении 1:1), препарата
Лизоформин 3000 (5 %). Время экспозиции 5, 10, 15 и
20 мин. В каждом варианте опыта по 100 эксплантов.
Учитывали жизнеспособность эксплантов по
соотношению живых эксплантов к общему
количеству введенных в культуру на питательную
среду с минеральной основой WPM, разбавленной в
4 раза.
Далее растения-регенеранты клюквы болотной
культивировали на питательной среде WPM,
разбавленной в 4 раза, в условиях световой комнаты
при температуре воздуха +23–25 °C, относительной
влажности 75–80 % и фотопериоде 16/8 часов. На
этапе «собственно микроразмножение» изучали
влияние различных концентраций (1,0, 2,0, 3,0, 4,0,
5,0 и 6,0 мг/л) регулятора роста цитокининовой
группы 2ip в питательной среде на биометрические
показатели растений-регенерантов клюквы болотной.
Повторность опыта 3-х кратная, по 10 микрорастений
в каждом варианте. Учитывали количество, среднюю
длину и суммарный прирост микропобегов у
исследуемых растений-регенерантов.
Рисунок 1. Процесс стерилизации эксплантов клюквы
болотной для введения в культуру in vitro
Figure 1. Sterilization of European cranberry explants
to be introduced into in vitro culture
71
Макаров С. С. [и др.] Техника и технология пищевых производств. 2021. Т. 51. № 1 С. 67–76
На этапе укоренения растений in vitro заложили
опыт по изучению влияния препарата Корнерост
в различных концентрациях (1,0, 2,0, 3,0, 4,0 и
5,0 мг/л) на количество и длину корней клюквы
болотной. Использовали также питательную среду
WPM, разбавленную в 4 раза. Повторность опыта 3-х
кратная, по 10 микрорастений в каждом варианте.
Учитывали количество, среднюю длину и суммарный
прирост корней растений in vitro.
На этапе адаптации к нестерильным условиям
in vivo укорененные растения клюквы в условиях
адаптационной комнаты пересаживали на различные
субстраты (торф верхового типа; торф переходного
типа; торф + песок в соотношении 1:1; кокосовый
субстрат), которые предварительно стерилизовали
путем пропаривания, потом промачивали растворами
исследуемых препаратов в концентрациях 1,0 или
2,0 мг на 10 л воды. Через 7 дней укоренившиеся
in vitro растения высаживали на субстраты,
которые мульчировали мхом сфагнумом. Изучали
приживаемость адаптированных растений клюквы
болотной в зависимости от обработки субстратов
различными препаратами (хитозановый стимулятор
роста растений «Слокс Эко Артемия» и препараты
микоризного типа – Микогель, Микориза,
Биомикориза).
Статистическая обработка данных проводилась
с помощью программного обеспечения AGROS
v.2.11 и пакета Microsoft Office 2016. Наименьшую
Таблица 1. Жизнеспособность эксплантов (%) клюквы болотной в зависимости
от стерилизующих агентов и времени экспозиции
Table 1. Viability of explants (%) of European cranberry, depending on sterilizing agents and exposure time
Время
экспозиции,
мин
Стерилизующий агент
Сулема
0,2 %
AgNO3
0,2 %
Экостерилизатор бесхлорный
5 % 1:1
Хлорная известь
1:1
Лизоформин 3000
5 %
Сорт «Дар Костромы»
5 25 5 5 9 15
10 23 96 72 45 90
15 83 41 54 75 87
20 10 8 95 81 58
Гибридная форма 1-15-635
5 24 8 6 5 14
10 20 95 42 36 89
15 82 50 62 78 82
20 13 12 90 85 60
Рисунок 2. Образование микропобегов растений клюквы
болотной in vitro при добавлении цитокинина 2ip:
a – сорт «Дар Костромы»; b – гибридная форма 1-15-635
Figure 2. Microshoots of European cranberry plants in vitro after
adding cytokinin 2ip: a – Dar Kostromy; b – hybrid 1-15-635
(a) (b)
Рисунок 3. Корнеобразование растений клюквы болотной
in vitro при добавлении препарата Корнерост: a – сорт
«Дар Костромы»; b – гибридная форма 1-15-635
Figure 3. Roots of European cranberry plants in vitro after adding
Kornerost: a – Dar Kostromy; b – hybrid 1-15-635
(a) (b)
72
Makarov S.S. et al. Food Processing: Techniques and Technology, 2021, vol. 51, no. 1, pp. 67–76
существенную разницу (НСР05) рассчитывали по
общепринятой методике дисперсионного анализа.
Результаты и их обсуждение
Проведенные наблюдения показали, что на этапе
введения в культуру in vitro оптимальная экспозиция
обработки эксплантов зависит от стерилизующего
раствора (рис. 1).
Высокая жизнеспособность эксплантов у сорта
«Дар Костромы» и гибридной формы 1-15-635
установлена при стерилизации азотнокислым
серебром AgNO3 0,2 % (95–96 %) и препаратом
Лизоформин 3000 5 % (89–90%) при экспозиции
10 мин. При использовании раствора сулемы 0,2 %
при экспозиции 15 мин жизнеспособность составила
82–83 %, а в вариантах обработки растворами
препарата экостерилизатора бесхлорного 5 % (в
соотношении 1:1) и хлорной извести (в соотношении
1:1) при экспозиции 20 мин: 90–95 и 81–85 %
соответственно (табл. 1).
На этапе «собственно микроразмножение»
установлено, что при возрастании концентрации
цитокинина 2ip от 1,0 до 5,0 мг/л в питательной
среде WPM, разбавленной в 4 раза, увеличивались
количество, средняя длина и суммарный прирост
Таблица 2. Влияние концентрации цитокинина 2ip на биометрические показатели одного растения клюквы болотной in vitro
Table 2. Effect of cytokinin 2ip concentration on the biometric profile of one European cranberry plant in vitro
Концентрация
цитокинина 2ip, мг/л
Биометрические показатели
Количество побегов, шт. Средняя длина побегов, см Суммарный прирост побегов, см
Сорт «Дар Костромы»
1,0 3,8 ± 0,2 10,8 ± 0,9 41,5 ± 3,3
2,0 4,1 ± 0,1 11,1 ± 1,0 46,5 ± 2,5
3,0 4,9 ± 0,3 12,3 ± 1,2 60,2 ± 3,6
4,0 5,9 ± 0,2 12,9 ± 1,2 76,1 ± 2,8
5,0 8,8 ± 0,5 14,5 ± 1,5 127,6 ± 2,4
6,0 7,8 ± 0,4 13,7 ± 1,3 106,9 ± 3,9
НСР05 0,58 1,15 2,09
Гибридная форма 1-15-635
1,0 4,0 ± 0,2 11,2 ± 0,8 44,8 ± 2,3
2,0 4,5 ± 0,3 11,6 ± 1,1 52,2 ± 3,4
3,0 5,9 ± 0,3 12,2 ± 1,2 72,6 ± 2,6
4,0 7,6 ± 0,2 13,5 ± 1,2 102,6 ± 2,9
5,0 9,2 ± 0,5 15,1 ± 1,5 140,2 ± 2,5
6,0 8,1 ± 0,4 14,3 ± 1,2 116,3 ± 2,1
НСР05 0,64 1,21 2,21
Таблица 3. Влияние препарата Корнерост на биометрические показатели одного растения клюквы болотной in vitro
Table 3. Effect of Kornerost on the biometric profile of one European cranberry plant in vitro
Концентрация препарата
Корнерост, мг/л
Биометрические показатели
Количество корней, шт. Средняя длина корней, см Суммарный прирост корней, см
Сорт «Дар Костромы»
1,0 4,0 ± 0,2 6,1 ± 0,4 24,5 ± 1,4
2,0 4,5 ± 0,2 6,9 ± 0,9 31,1 ± 1,8
3,0 5,2 ± 0,3 7,2 ± 0,6 37,5 ± 1,9
4,0 5,6 ± 0,3 8,2 ± 0,2 46,2 ± 1,0
5,0 6,3 ± 0,2 9,2 ± 0,5 58,6 ± 1,1
НСР05 0,74 0,83 2,30
Гибридная форма 1-15-635
1,0 4,2 ± 0,2 6,2 ± 0,4 26,4 ± 1,3
2,0 4,7 ± 0,2 7,0 ± 0,6 32,9 ± 1,9
3,0 5,8 ± 0,3 7,3 ± 0,8 42,4 ± 1,8
4,0 5,5 ± 0,3 8,6 ± 0,4 47,3 ± 1,0
5,0 6,0 ± 0,2 9,5 ± 0,7 57,3 ± 1,1
НСР05 0,76 0,92 2,32
73
Макаров С. С. [и др.] Техника и технология пищевых производств. 2021. Т. 51. № 1 С. 67–76
побегов исследуемых растений клюквы болотной
(рис. 2).
У растений сорта «Дар Костромы» при
добавлении регулятора роста цитокининовой группы
2ip в концентрации 5,0 мг/л отмечено максимальное
количество побегов (8,8 шт.). Их средняя длина
достигала 14,5 см, а суммарный прирост – 127,6 см
на одно растение; у перспективной гибридной
формы 1-15-635 – 9,2 шт., 15,1 и 140,2 см
соответственно. Различия статистически значимы.
Однако при дальнейшем увеличении концентрации
цитокинина 2ip до 6,0 мг/л наметилась тенденция к
существенному снижению этих показателей (табл. 2).
На этапе «укоренение in vitro» выявлено, что
количество, средняя длина и суммарный прирост
корней у растений-регенерантов клюквы болотной
увеличивались с повышением в питательной среде
WPM, разбавленной в 4 раза, концентрации препарата
Корнерост (рис. 3).
Отмечено, что они достигли максимальных
значений при добавлении в питательную среду
препарата Корнерост в концентрации 5,0 мг/л. В
этом варианте у сорта «Дар Костромы» количество
корней составляло 6,3 шт., их средняя длина – 9,2 см,
Таблица 4. Приживаемость растений клюквы болотной
in vitro в нестерильных условиях in vivo в зависимости
от типа субстрата (%)
Table 4. Survival rate of European cranberry plants in vitro under nonsterile
conditions in vivo, depending on the type of substrate (%)
Вариант субстрата Сорт
Сорт «Дар
Костромы»
Гибридная
форма 1-15-635
Торф верхового типа 96 92
Торф переходного типа 86 80
Торф + песок 1:1 62 64
Кокосовый субстрат 44 46
Рисунок 4. Растения клюквы болотной in vitro,
адаптированные к условиям in vivo на субстрате
из верхового торфа
Figure 4. European cranberry plants in vitro adapted
to in vivo conditions in a high-moor peat substrate
Таблица 5. Влияние обработки субстрата различными
препаратами на приживаемость (%) клюквы болотной
в нестерильных условиях in vivo
Table 5. Effect of various medications on the survival rate (%)
of marsh cranberries in non-sterile conditions in vivo
Вариант Концентрация препарата, мг/л
0,1 0,2
Сорт «Дар Костромы»
Вода (контроль) 48
Слокс Эко Артемия 58 78
Микогель 86 94
Микориза 66 70
Биомикориза 68 78
Гибридная форма 1-15-635
Вода (контроль) 50
Слокс Эко Артемия 60 76
Микогель 90 100
Микориза 70 78
Биомикориза 90 92
суммарный прирост – 58,6 см; а у гибридной
формы 1-15-635 – 6 шт., 9,5 и 57,3 см соответствен-
но (табл. 3).
Для адаптации клюквы болотной in vitro к
нестерильным условиям in vivo растения пересадили
на различные субстраты из верхового торфа.
Приживаемость различных сортов клюквы болотной
в зависимости от типа субстрата приведена
в таблице 4.
Наилучшие показатели приживаемости растений
клюквы болотной обоих сортов были выявлены на
субстрате из верхового торфа и составили 92–96 %
(рис. 4).
Далее исследования проводили на субстрате из
верхового торфа, показавшем лучшие результаты.
Обработка торфяного субстрата различными
препаратами оказала влияние на приживаемость
адаптируемых к нестерильным условиям in vivo
растений клюквы болотной. В контрольном
варианте, где субстрат промачивали чистой водой,
приживаемость оказалась самой низкой и составила
48–50 % (табл. 5).
В вариантах с использованием каждого из
препаратов в концентрации 0,2 мг/л приживаемость
адаптируемых растений была выше, чем при
внесении их в питательную среду в концентрации
0,1 мг/л. Самая высокая приживаемость растений
наблюдалась в вариантах с добавлением в субстрат из
верхового торфа, содержащего микоризу, препарата
Микогель в концентрации 0,2 мг/л и достигала: у
сорта «Дар Костромы» – 94 %, у гибридной формы
1-15-635 – 100 %.
Выводы
В результате проведенных исследований уста-
новлено:
74
Makarov S.S. et al. Food Processing: Techniques and Technology, 2021, vol. 51, no. 1, pp. 67–76
При клональном микроразмножении клюквы
болотной на этапе введения в культуру in vitro
наиболее высокая приживаемость эксплантов
(90–96 %) отмечена в вариантах с использованием
в качестве основных стерилизующих растворов
азотнокислого серебра AgNO3 (0,2 %) и препарата
Лизоформин 3000 (5 %) при экспозиции 10 мин, а
также препарата экостерилизатор бесхлорный (5 %) в
соотношении 1:1 при экспозиции 20 мин;
На этапе «собственно микроразмножение»
максимальные показатели по количеству побегов,
их средней длине и суммарному приросту у
клонируемых растений клюквы болотной сорта
«Дар Костромы» и гибридной формы 1-15-635
выявлены при добавлении в питательную среду
WPM, разбавленную в 4 раза, цитокинина 2ip в
концентрации 5,0 мг/л;
На этапе «укоренение in vitro» процесс
корнеобразования у растений клюквы болотной
обоих сортов наиболее интенсивно проходил при
содержании в питательной среде WPM, разбавленной
в 4 раза, препарата Корнерост в концентрации
5,0 мг/л;
Приживаемость адаптируемых к условиям in vivo
растений клюквы болотной оказалась максимальной
и достигала 94–100 % при обработке субстрата
раствором препарата Микогель в концентрации
0,2 мг/л.
Критерии авторства
С. С. Макаров руководил проектом, проводил
закладку лабораторного опыта на этапах введения в
культуру in vitro, «собственно микроразмножение»
и адаптации растений к условиям in vivo, проводил
анализ литературных источников по вопросу
использования биотехнологических методов размно-
жения растений. И. Б. Кузнецова проводила закладку
лабораторного опыта на этапах «собственно
микроразмножение» и укоренения in vitro, проводила
статистическую обработку данных. М. Т. Упадышев
проводил анализ литературных источников по
вопросу пищевой и лекарственной ценности клюквы
болотной. С. А. Родин проводил анализ литературных
источников по вопросу актуальности использования
недревесных ресурсов леса в рамках многоцелевого
лесопользования. А.И. Чудецкий проводил закладку
лабораторного опыта на этапе адаптации растений
к условиям in vivo, проводил статистическую
обработку данных.
Конфликт интересов
Авторы заявляют об отсутствии конфликта
интересов.
Благодарности
Выражаем благодарность канд. с.-х. наук И. А. Ко-
реневу, канд. био. наук Г. Ю. Макеевой, канд. био.
наук Г. В. Тяк, канд. с.-х. наук С. Ю. Цареградской,
канд. био. наук Л. Е. Курлович, В. А. Макееву,
А. В. Тяку.
Contribution
S.S. Makarov supervised the project, performed the
laboratory experiments at the stages of introduction,
micropropagation proper, and adaptation, and analyzed
scientific publications on biotechnological methods in
plant propagation. I.B. Kuznetsova participated in the
laboratory experiment at the stages of micropropagation
proper and rooting in vitro, as well as processed statistical
data. M.T. Upadyshev analyzed available scientific
sources on the nutritional and medicinal value of
European cranberries. S.A. Rodin summarized scientific
data on non-timber forest resources in multipurpose forest
management. A.I. Chudetsky performed the laboratory
experiments at the stage of plant adaptation to in vivo
conditions and processed statistical data.
Conflict of interest
The authors declare that there is no conflict of interest
regarding the publication of this article
Acknowledgments
We express our gratitude to Сand.Sci.(Agri.)
I.A. Korenev, Сand.Sci.(Bio.) G.Yu. Makeeva, Сand.
Sci.(Bio.) G.V. Tyak, Сand.Sci.(Agri.) S.Yu. Tsaregradskaya,
Сand.Sci.(Bio.) L.E. Kurlovich, V.A. Makeev,
A.V. Tyak.

1. Makarov SS, Bagayev ES, Tsaregradskaya SYu, Kuznetsova IB. Problems of use and reproduction of phytogenic food and medicinal forest resources on the forest fund lands of the Kostroma region. Lesnoy Zhurnal (Russian Forestry Journal). 2019;372(6):118-131. (In Russ.). https://doi.org/10.17238/issn0536-1036.2019.6.118.

2. Korenev IA, Tyak GV, Makarov SS. Creation of new varietiesof forest berry plantsand prospects of their intensive reproduction (in vitro). Forestry Information. 2019;(3):180-189. (In Russ.). https://doi.org/10.24419/LHI.2304-3083.2019.3.15.

3. Oszmiański J, Wojdiło A, Lachowicz S, Gorzelany J, Matłok N. Comparison of bioactive potential of cranberry fruit and fruit-based products versus leaves. Journal of Functional Foods. 2016;22:232-242. https://doi.org/10.1016/j.jff.2016.01.015.

4. Karlsons A, Osvalde A, Čekstere G, Ponnale J. Research on the mineral composition of cultivated and wild blueberries and cranberries. Agronomy Research. 2018;16(2):454-463. https://doi.org/10.15159/AR.18.039.

5. Gu K-D, Wang C-K, Hu D-G, Hao Y-J. How do anthocyanins paint our horticulture products? Scientia Horticulturae. 2019;249:257-262. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2019.01.034.

6. Peron G, Sut S, Pellizzaro A, Brun P, Voinovich D, Castagliuolo I, et al. The antiadhesive activity of cranberry phytocomplex studied by metabolomics: Intestinal PAC-A metabolites but not intact PAC-A are identified as markers in active urines against uropathogenic Escherichia coli. Fitoterapia. 2017;122:67-75. https://doi.org/10.1016/j.fitote.2017.08.014.

7. Debnath SC, An D. Antioxidant properties and structured biodiversity in a diverse set of wild cranberry clones. Heliyon. 2019;5(4). https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2019.e01493.

8. Philip N, Walsh LJ. Cranberry polyphenols: Natural weapons against dental caries. Dentistry Journal. 2019;7(1). https://doi.org/10.3390/dj7010020.

9. Rocha DMUP, Caldas APS, da Silva BP, Hermsdorff HHM, Alfenas RDCG. Effects of blueberry and cranberry consumption on type 2 diabetes glycemic control: A systematic review. Critical Reviews in Food Science and Nutrition. 2019;59(11):1816-1828. https://doi.org/10.1080/10408398.2018.1430019.

10. Coleman CM, Ferreira D. Oligosaccharides and complex carbohydrates: A new paradigm for cranberry bioactivity. Molecules. 2020;25(4). https://doi.org/10.3390/molecules25040881.

11. Matsneva OV, Tashmatova LV. Clonal micro-propagation of strawberries is a promising method of modern nursery practice (review). Contemporary Horticulture. 2019;4:113-119. (In Russ.). https://doi.org/10.24411/2312-6701-2019-10411.

12. Sedlák J, Paprštein F. Micropropagation of cranberry (Vaccinium macrocarpon) through shoot tip cultures - Short communication. Horticultural Science. 2011;38(4):159-162. https://doi.org/10.17221/115/2010-HORTSCI.

13. Litwińczuk W. Micropropagation of Vaccinium sp. by in vitro axillary shoot proliferation. In: Lambardi M, Ozudogru EA, Jain SM, editors. Protocols for micropropagation of selected economically-important horticultural plants. Totowa: Humana Press; 2013. pp. 63-76. https://doi.org/10.1007/978-1-62703-074-8_5.

14. Zontikov DN, Zontikova SA, Malakhova KV, Maramokhin EV. Influence of the composition of nutritional media and growth regulators during clonal micropropagation of some polyliploid forms of the genus Vaccinium L. Izvestia of Samara Scientific Center of the Russian Academy of Sciences. 2019;21(2)(88):39-44. (In Russ.).

15. Yang Y, Asyakina LK, Babich OO, Dyshlyuk LS, Sukhikh SA, Popov AD, et al. Physicochemical properties and biological activity of extracts of dried biomass of callus and suspension cells and in vitro root cultures. Food Processing: Techniques and Technology. 2020;50(3):480-492. (In Russ.). https://doi.org/10.21603/2074-9414-2020-3-480-492.